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一种胶质瘤预后标志物CPVL及其应用 

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申请/专利权人:皖南医学院第一附属医院(皖南医学院弋矶山医院)

摘要:本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种胶质瘤预后标志物CPVL及其应用,现提出如下方案,一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA,检测标志物CPVLmRNA在胶质瘤组织中表达量的试剂在制备胶质瘤预后制剂的应用,一种胶质瘤预后试剂盒,能够检测胶质瘤组织中的标志物CPVLmRNA的含量,包含有用于检测标志物CPVLmRNA的含量的PCR引物,一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA的应用。本发明能够有效的验证CPVL敲减能促进胶质瘤细胞凋亡,抑制胶质瘤细胞增殖和致瘤能力,调节胶质瘤细胞周期,CPVL敲减诱导胶质瘤细胞凋亡,阐明胶质瘤的发病机制具有重要的理论和实践意,致癌基因CPVL在胶质瘤发生发展中发挥重要作用,从而为胶质瘤的治疗提供一个潜在的治疗靶点。

主权项:1.一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA,其序列号如表1所示。

全文数据:一种胶质瘤预后标志物CPVL及其应用技术领域本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种胶质瘤预后标志物CPVL及其应用。背景技术胶质瘤是临床上最常见的颅内恶性肿瘤。由于各种理化、遗传等因素的影响,胶质瘤的发病率常居于颅内肿瘤首位,占颅脑肿瘤的50%左右。胶质瘤因具有发病隐匿,生长速度快,易侵袭与转移,病死率高,平均生存期短等特点,已经成为了对人生命健康造成极大危害的疾病类型。目前采用的手术切除及放、化疗等传统疗法并未明显改善胶质瘤患者的预后效果,一直是中枢神经系统恶性肿瘤治疗中的一大难题,其根本原因在于胶质瘤的发病机制还不完全清楚。因此,阐明胶质瘤的发病机制具有重要的理论和实践意义。发明内容本发明的目的是为了解决现有技术中的缺点,而提出的一种胶质瘤预后标志物CPVL及其应用。为了实现上述目的,本发明采用了如下技术方案:一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA,其序列号如表1所示。检测标志物CPVLmRNA在胶质瘤组织中表达量的试剂在制备胶质瘤预后制剂的应用。一种胶质瘤预后试剂盒,能够检测胶质瘤组织中的标志物CPVLmRNA的含量,包含有用于检测标志物CPVLmRNA的含量的PCR引物,其序列号如表2所示。一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA的应用,包含以下步骤,其步骤如下:S1:检测CPVLmRNA在样品中的表达,其中样品包括正常脑细胞、胶质瘤细胞、五对胶质瘤及癌旁正常脑细胞;将样品铺于细胞6孔板,置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养,待细胞长满,提取各细胞的总RNA,应用real-timePCR技术对样品的CPVL基因进行检测;同时提取各样品细胞的总蛋白,利用WesternBlot技术对不同样品中CPVL基因表达的蛋白进行检测。S2:对胶质瘤标本进行CPVL蛋白表达的检测和分析;收集经病理确诊的不同病理分级和恶性程度的胶质瘤组织标本各10例以及10例因脑外伤行减压术后的正常脑组织标本,根据WHO神经系统肿瘤分类病理标准,Ⅰ-Ⅱ级为低恶性度胶质瘤,Ⅲ-Ⅳ级为高恶性度胶质瘤,提取各组织标本的总RNA,应用real-timePCR技术对人脑胶质瘤组织和正常脑组织中的CPVLmRNA进行检测;然后提取组织标本的总蛋白,利用WesternBlot技术对人脑胶质瘤组织和正常脑组织中检测CPVLmRNA在表达的蛋白进行检测;将各样本石蜡包埋,冰冻切片,运用免疫组化技术观察CPVLmRNA在人脑胶质瘤组织和正常脑组织中的分布情况;并进一步比较CPVLmRNA表达分布情况与胶质瘤病理分期分级的相关性;结合临床生存期随访数据,以患者直接或间接因胶质瘤疾病“死亡”作为终点事件,计算3年累计生存概率;根据各样本CPVLmRNA的real-timePCR表达量数据将样本分为高表达组和低表达组,以回访时间作为x轴以累计概率作为y轴绘制生存曲线,分析CPVLmRNA表达与胶质瘤患者临床预后的相关性。S3:对样品胶质瘤细胞进行感染对CPVLmRNA表达高的胶质瘤细胞株U251和LN382进行慢病毒感染。S4:将S3感染后的胶质瘤细胞进行克隆形成实验;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,并计数;以每孔100、200、300个细胞的梯度密度分别接种于3个细胞6孔板中,并轻轻转动,使细胞分散均匀;置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养14天后,经常观察,当培养皿中出现肉眼可见的克隆时,终止培养;弃去上清液,用PBS清洗2次;加纯甲醇或1:3醋酸甲醇5mL,固定15分钟;然后去固定液,加适量结晶紫染色液染色15分钟,然后用流水缓慢洗去染色液,空气干燥;观察染色和克隆大小,计数并计算克隆形成率。S5:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞增殖实验运用MTT法检测细胞增殖,预计检测5天;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,计数;对照慢病毒组和CPVL慢病毒组以2000cellswell分别接种6个孔于96孔板,培养体系为100μL孔,铺板过程中需确保每孔加入细胞数目一致,另外设6个只有100μl完全培养基的空白孔做基准值;实验开始时共铺5块板,置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养;自培养第二天开始,每天用MTT法检测一块板;MTT检测方法:培养终止前4h加入20μL5mgmL的MTT于孔中,无需换液;4h后完全吸去培养液,注意不要吸掉孔板底部的甲瓒颗粒,加100μLDMSO溶解甲瓒颗粒;振荡器振荡2-5min,酶标仪490570nm检测OD值。运用Celigo细胞计数法检测细胞增殖,预计检测5天;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,计数;对照慢病毒组和CPVL慢病毒组以2000cellswell分别接种6个孔于96孔板,每组3复孔,培养体系为100μL孔,铺板过程中需确保每孔加入细胞数目一致,置于37℃、5%CO2培养箱培养;从铺板后第二天开始,每天Celigo检测读板一次,连续检测读板5天;通过调整analysissettings的输入参数,准确地计算出每次扫描孔板中的带绿色荧光的细胞的数量;对数据进行统计绘图,绘出5天的细胞增殖曲线。S6:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞周期实验运用PI-FACS法检测细胞周期,两实验组细胞各接种3个孔于细胞6孔板。待细胞贴壁后饥饿处理14h后加入完全培养基培养,待细胞进入对数生长期;胰酶消化,离心收集细胞,弃上清,用预冷PBS重悬,再次离心弃上清,共2次;加入预冷70%乙醇,固定3小时;离心收集细胞,以1mL的PBS洗细胞一次,加入500μlPBS含50μgmL溴化乙锭PI,100μgmLRNaseA,0.2%TritonX-100,4℃避光孵育30分钟;以标准程序用流式细胞仪检测。S7:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞凋亡实验运用AnnexinV-APC单染法检测细胞凋亡,两实验组细胞各接种3个孔于细胞6孔板;待细胞生长状态良好,胰酶消化,离心;在室温下用PBS洗涤1500rpmmin,离心5min;用500μlbindingbuffer重悬细胞,加入10μlAnnexin-Vmediumbuffer及1μlAnnexinV荧光抗体,常温避光孵育15min后离心;用PBS洗涤后,500μlbindingbuffer重悬细胞,在1h内用流式细胞术检测并进行数据分析。S8:将S3感染后的胶质瘤细胞进行回复实验在U251和LN382细胞中沉默CPVL基因,利用S3、S4、S5、S6和S7的步骤进行试验,并记录检测后的细胞增殖数据。本发明的有益效果:该发明能够有效的验证CPVL敲减能促进胶质瘤细胞凋亡,抑制胶质瘤细胞增殖和致瘤能力,调节胶质瘤细胞周期,CPVL敲减诱导胶质瘤细胞凋亡,阐明胶质瘤的发病机制具有重要的理论和实践意,致癌基因CPVL在胶质瘤发生发展中发挥重要作用,从而为胶质瘤的治疗提供一个潜在的治疗靶点。附图说明图1为CPVLmRNA在胶质瘤细胞和正常脑细胞的表达示意图;图2为采用real-timePCR技术检测脑胶质瘤细胞株U251、LN382和U87MG中CPVLmRNA的相对表达示意图;图3为采用WesternBlot技术检测CPVL在正常脑细胞HEB和胶质瘤细胞系U251、LN382和U87MG中表达的示意图;图4为采用WesternBlot技术检测CPVL在胶质瘤组织T和邻近非癌组织ANT中的蛋白表达的示意图;图5为采用real-timePCR技术检测脑胶质瘤低临床分期和高临床分期标本中CPVLmRNA的相对表达的示意图;图6为采用WesternBlot技术分析CPVL在低临床期和高临床期脑胶质瘤中的表达的示意图;图7采用免疫组化分析CPVL蛋白在胶质瘤组织T和邻近非癌组织ANT中的表达的示意图;图8为采用免疫组化分析CPVL在正常脑组织和不同临床分期的胶质瘤组织中CPVL表达的示意图;图9为Kaplan-Meier生存曲线和对数秩检验生存的示意图;图10为采用real-timePCR技术检测在U251和LN382细胞中敲除CPVL后CPVLmRNA的相对表达的示意图;图11为采用WesternBlot技术检测在U251和LN382细胞中敲除CPVL后CPVL蛋白表达的示意图;图12为U251和LN382细胞中敲除CPVL后在进行克隆实验的克隆数量记录的示意图;图13为U251和LN382细胞中敲除CPVL后在进行克隆实验的对照的示意图;图14为采用流式细胞仪检测U251和LN382细胞中敲除CPVL后细胞的凋亡细胞百分率的示意图;图15为采用流式细胞术检测U251和LN382细胞中敲除CPVL后细胞的G1、G2M期细胞百分比的示意图。具体实施方式下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。参照图1-15,一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA,其序列号如表1所示。表1:检测标志物CPVLmRNA在胶质瘤组织中表达量的试剂在制备胶质瘤预后制剂的应用。一种胶质瘤预后试剂盒,能够检测胶质瘤组织中的标志物CPVLmRNA的含量,包含有用于检测标志物CPVLmRNA的含量的PCR引物,其序列号如表2所示。表1:一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA的应用,包含以下步骤,其步骤如下:S1:检测CPVLmRNA在样品中的表达,其中样品包括正常脑细胞、胶质瘤细胞、五对胶质瘤及癌旁正常脑细胞;将样品铺于细胞6孔板,置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养,待细胞长满,提取各细胞的总RNA,应用real-timePCR技术对样品的CPVL基因进行检测;同时提取各样品细胞的总蛋白,利用WesternBlot技术对不同样品中CPVL基因表达的蛋白进行检测。S2:对胶质瘤标本进行CPVL蛋白表达的检测和分析;收集经病理确诊的不同病理分级和恶性程度的胶质瘤组织标本各10例以及10例因脑外伤行减压术后的正常脑组织标本,根据WHO神经系统肿瘤分类病理标准,Ⅰ-Ⅱ级为低恶性度胶质瘤,Ⅲ-Ⅳ级为高恶性度胶质瘤,提取各组织标本的总RNA,应用real-timePCR技术对人脑胶质瘤组织和正常脑组织中的CPVLmRNA进行检测;然后提取组织标本的总蛋白,利用WesternBlot技术对人脑胶质瘤组织和正常脑组织中检测CPVLmRNA在表达的蛋白进行检测;将各样本石蜡包埋,冰冻切片,运用免疫组化技术观察CPVLmRNA在人脑胶质瘤组织和正常脑组织中的分布情况;并进一步比较CPVLmRNA表达分布情况与胶质瘤病理分期分级的相关性;结合临床生存期随访数据,以患者直接或间接因胶质瘤疾病“死亡”作为终点事件,计算3年累计生存概率;根据各样本CPVLmRNA的real-timePCR表达量数据将样本分为高表达组和低表达组,以回访时间作为x轴以累计概率作为y轴绘制生存曲线,分析CPVLmRNA表达与胶质瘤患者临床预后的相关性。S3:对样品胶质瘤细胞进行感染对CPVLmRNA表达高的胶质瘤细胞株U251和LN382进行慢病毒感染。S4:将S3感染后的胶质瘤细胞进行克隆形成实验;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,并计数;以每孔100、200、300个细胞的梯度密度分别接种于3个细胞6孔板中,并轻轻转动,使细胞分散均匀;置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养14天后,经常观察,当培养皿中出现肉眼可见的克隆时,终止培养;弃去上清液,用PBS清洗2次;加纯甲醇或1:3醋酸甲醇5mL,固定15分钟;然后去固定液,加适量结晶紫染色液染色15分钟,然后用流水缓慢洗去染色液,空气干燥;观察染色和克隆大小,计数并计算克隆形成率。S5:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞增殖实验运用MTT法检测细胞增殖,预计检测5天;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,计数;对照慢病毒组和CPVL慢病毒组以2000cellswell分别接种6个孔于96孔板,培养体系为100μL孔,铺板过程中需确保每孔加入细胞数目一致,另外设6个只有100μl完全培养基的空白孔做基准值;实验开始时共铺5块板,置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养;自培养第二天开始,每天用MTT法检测一块板;MTT检测方法:培养终止前4h加入20μL5mgmL的MTT于孔中,无需换液;4h后完全吸去培养液,注意不要吸掉孔板底部的甲瓒颗粒,加100μLDMSO溶解甲瓒颗粒;振荡器振荡2-5min,酶标仪490570nm检测OD值。运用Celigo细胞计数法检测细胞增殖,预计检测5天;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,计数;对照慢病毒组和CPVL慢病毒组以2000cellswell分别接种6个孔于96孔板,每组3复孔,培养体系为100μL孔,铺板过程中需确保每孔加入细胞数目一致,置于37℃、5%CO2培养箱培养;从铺板后第二天开始,每天Celigo检测读板一次,连续检测读板5天;通过调整analysissettings的输入参数,准确地计算出每次扫描孔板中的带绿色荧光的细胞的数量;对数据进行统计绘图,绘出5天的细胞增殖曲线。S6:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞周期实验运用PI-FACS法检测细胞周期,两实验组细胞各接种3个孔于细胞6孔板。待细胞贴壁后饥饿处理14h后加入完全培养基培养,待细胞进入对数生长期;胰酶消化,离心收集细胞,弃上清,用预冷PBS重悬,再次离心弃上清,共2次;加入预冷70%乙醇,固定3小时;离心收集细胞,以1mL的PBS洗细胞一次,加入500μlPBS含50μgmL溴化乙锭PI,100μgmLRNaseA,0.2%TritonX-100,4℃避光孵育30分钟;以标准程序用流式细胞仪检测。S7:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞凋亡实验运用AnnexinV-APC单染法检测细胞凋亡,两实验组细胞各接种3个孔于细胞6孔板;待细胞生长状态良好,胰酶消化,离心;在室温下用PBS洗涤1500rpmmin,离心5min;用500μlbindingbuffer重悬细胞,加入10μlAnnexin-Vmediumbuffer及1μlAnnexinV荧光抗体,常温避光孵育15min后离心;用PBS洗涤后,500μlbindingbuffer重悬细胞,在1h内用流式细胞术检测并进行数据分析。S8:将S3感染后的胶质瘤细胞进行回复实验在U251和LN382细胞中沉默CPVL基因,利用S3、S4、S5、S6和S7的步骤进行试验,并记录检测后的细胞增殖数据。本发明中:采用real-timePCR技术和利用WesternBlot技术检测CPVL在正常脑细胞、胶质瘤细胞、五对胶质瘤及癌旁正常脑组织中的表达,应用免疫组化技术对179例石蜡包埋的胶质瘤标本进行CPVL蛋白表达分析,然后采用MTT法、克隆形成实验及裸鼠成瘤实验探讨CPVL对胶质瘤细胞增殖和致瘤能力的影响,同时运用流式细胞术分析CPVL对胶质瘤细胞凋亡和细胞周期的影响,最终利用回复实验来验证CPVL对胶质瘤细胞凋亡和细胞周期的影响的结果。实验表明与正常脑细胞和组织相比,胶质瘤细胞及组织中CPVL表达显著上调,免疫组织化学分析显示CPVL的表达与临床晚期和较差的存活率显著相关,CPVL敲减能促进胶质瘤细胞凋亡,抑制胶质瘤细胞增殖和致瘤能力,调节胶质瘤细胞周期,CPVL敲减诱导胶质瘤细胞凋亡,该发明能够有效的验证CPVL敲减能促进胶质瘤细胞凋亡,抑制胶质瘤细胞增殖和致瘤能力,调节胶质瘤细胞周期,CPVL敲减诱导胶质瘤细胞凋亡,阐明胶质瘤的发病机制具有重要的理论和实践意,致癌基因CPVL在胶质瘤发生发展中发挥重要作用,从而为胶质瘤的治疗提供一个潜在的治疗靶点。以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。

权利要求:1.一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA,其序列号如表1所示。2.检测权利要求1所述的标志物CPVLmRNA在胶质瘤组织中表达量的试剂在制备胶质瘤预后制剂的应用。3.一种胶质瘤预后试剂盒,能够检测胶质瘤组织中的标志物CPVLmRNA的含量,包含有用于检测标志物CPVLmRNA的含量的PCR引物,其序列号如表2所示。4.一种胶质瘤预后标志物CPVLmRNA的应用,包含以下步骤,其步骤如下:S1:检测CPVLmRNA在样品中的表达,其中样品包括正常脑细胞、胶质瘤细胞、五对胶质瘤及癌旁正常脑细胞;将样品铺于细胞6孔板,置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养,待细胞长满,提取各细胞的总RNA,应用real-timePCR技术对样品的CPVL基因进行检测;同时提取各样品细胞的总蛋白,利用WesternBlot技术对不同样品中CPVL基因表达的蛋白进行检测。S2:对胶质瘤标本进行CPVL蛋白表达的检测和分析;收集经病理确诊的不同病理分级和恶性程度的胶质瘤组织标本各10例以及10例因脑外伤行减压术后的正常脑组织标本,根据WHO神经系统肿瘤分类病理标准,Ⅰ-Ⅱ级为低恶性度胶质瘤,Ⅲ-Ⅳ级为高恶性度胶质瘤,提取各组织标本的总RNA,应用real-timePCR技术对人脑胶质瘤组织和正常脑组织中的CPVLmRNA进行检测;然后提取组织标本的总蛋白,利用WesternBlot技术对人脑胶质瘤组织和正常脑组织中检测CPVLmRNA在表达的蛋白进行检测;将各样本石蜡包埋,冰冻切片,运用免疫组化技术观察CPVLmRNA在人脑胶质瘤组织和正常脑组织中的分布情况;并进一步比较CPVLmRNA表达分布情况与胶质瘤病理分期分级的相关性;结合临床生存期随访数据,以患者直接或间接因胶质瘤疾病“死亡”作为终点事件,计算3年累计生存概率;根据各样本CPVLmRNA的real-timePCR表达量数据将样本分为高表达组和低表达组,以回访时间作为x轴以累计概率作为y轴绘制生存曲线,分析CPVLmRNA表达与胶质瘤患者临床预后的相关性。S3:对样品胶质瘤细胞进行感染对CPVLmRNA表达高的胶质瘤细胞株U251和LN382进行慢病毒感染。S4:将S3感染后的胶质瘤细胞进行克隆形成实验;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,并计数;以每孔100、200、300个细胞的梯度密度分别接种于3个细胞6孔板中,并轻轻转动,使细胞分散均匀;置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养14天后,经常观察,当培养皿中出现肉眼可见的克隆时,终止培养;弃去上清液,用PBS清洗2次;加纯甲醇或1:3醋酸甲醇5mL,固定15分钟;然后去固定液,加适量结晶紫染色液染色15分钟,然后用流水缓慢洗去染色液,空气干燥;观察染色和克隆大小,计数并计算克隆形成率。S5:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞增殖实验运用MTT法检测细胞增殖,预计检测5天;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,计数;对照慢病毒组和CPVL慢病毒组以2000cellswell分别接种6个孔于96孔板,培养体系为100μL孔,铺板过程中需确保每孔加入细胞数目一致,另外设6个只有100μl完全培养基的空白孔做基准值;实验开始时共铺5块板,置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养;自培养第二天开始,每天用MTT法检测一块板;MTT检测方法:培养终止前4h加入20μL5mgmL的MTT于孔中,无需换液;4h后完全吸去培养液,注意不要吸掉孔板底部的甲瓒颗粒,加100μLDMSO溶解甲瓒颗粒;振荡器振荡2-5min,酶标仪490570nm检测OD值。运用Celigo细胞计数法检测细胞增殖,预计检测5天;将处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后,完全培养基重悬成细胞悬液,计数;对照慢病毒组和CPVL慢病毒组以2000cellswell分别接种6个孔于96孔板,每组3复孔,培养体系为100μL孔,铺板过程中需确保每孔加入细胞数目一致,置于37℃、5%CO2培养箱培养;从铺板后第二天开始,每天Celigo检测读板一次,连续检测读板5天;通过调整analysissettings的输入参数,准确地计算出每次扫描孔板中的带绿色荧光的细胞的数量;对数据进行统计绘图,绘出5天的细胞增殖曲线。S6:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞周期实验运用PI-FACS法检测细胞周期,两实验组细胞各接种3个孔于细胞6孔板。待细胞贴壁后饥饿处理14h后加入完全培养基培养,待细胞进入对数生长期;胰酶消化,离心收集细胞,弃上清,用预冷PBS重悬,再次离心弃上清,共2次;加入预冷70%乙醇,固定3小时;离心收集细胞,以1mL的PBS洗细胞一次,加入500μlPBS含50μgmL溴化乙锭PI,100μgmLRNaseA,0.2%TritonX-100,4℃避光孵育30分钟;以标准程序用流式细胞仪检测。S7:将S3感染后的胶质瘤细胞进行细胞凋亡实验运用AnnexinV-APC单染法检测细胞凋亡,两实验组细胞各接种3个孔于细胞6孔板;待细胞生长状态良好,胰酶消化,离心;在室温下用PBS洗涤1500rpmmin,离心5min;用500μlbindingbuffer重悬细胞,加入10μlAnnexin-Vmediumbuffer及1μlAnnexinV荧光抗体,常温避光孵育15min后离心;用PBS洗涤后,500μlbindingbuffer重悬细胞,在1h内用流式细胞术检测并进行数据分析。S8:将S3感染后的胶质瘤细胞进行回复实验在U251和LN382细胞中沉默CPVL基因,利用S3、S4、S5、S6和S7的步骤进行试验,并记录检测后的细胞增殖数据。

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